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本制品是采用SYBR Green I嵌合荧光法进行快速Real Time PCR的2×浓度预混型试剂，PCR反应液的配制十分简单方便。使用突变型Taq DNA聚合酶，结合精心优化的反应Buffer，可有效抑制低温下的非特异性扩增，实现快速PCR反应，并且能够在宽广的动态定量区域内对靶基因进行准确、快速、可重复的定量检测。并且，本制品中含有特定的ROX参考染料，适应于所有qPCR仪器，无需在不同仪器上配备不同浓度的ROX，只需在配制反应体系时加入引物和模板即可进行扩增，方便快捷。

• 快速：实现快速荧光定量，相较于传统qPCR，反应时间减少50%左右；
  
• 高特异性：采用新型工艺制备抗体修饰的HotStart Super Taq DNA聚合酶，无需热启动即可进行PCR反应，大大提高PCR扩增的特异性；
  
• 高效：bjbalb精心配制的RealTime PCR专用2×SuperMix，预混Universal ROX Passive Reference Dye，可适配市面上大部分仪器，加样更便捷高效，且具有更高的扩增效率和扩增灵敏度。

• 使用：请上下颠倒混合均匀，避免起泡，并经轻微离心后使用。反应液的配制、分装请使用新的（无污染的）枪头、Microtube等，避免污染。建议反应体积为20～50μL。
  
• 引物设计：一般为了增加灵敏度及扩增效率且抑制非特异性反应，扩增目标序列越短越好。建议扩增长度在200bp以下。

• 常用反应体系（20μL）：
  

  成分	用量
  2×快速SYBR qPCR mix	10μL
  上游引物	0.2～1.0μM（终浓度）
  下游引物	0.2～1.0μM（终浓度）
  模板	1～2μL
  RNase Free Water	至20μL

• 反应程序：
  
  • 快速qPCR程序：
    

    反应阶段	循环数	温度	时间
    预变性	1	95℃	30s①
    变性	35～45	95℃	5s
    	退火/延伸	60℃②	10～15s③
    熔解曲线	使用仪器默认熔解曲线采集程序④

  • 常规qPCR程序：
    

    反应阶段	循环数	温度	时间
    预变性	1	95℃	30s①
    变性	35～45	95℃	5s
    	退火/延伸	60℃②	30s
    熔解曲线	使用仪器默认熔解曲线采集程序④

  • 注^①：该预变性条件适合绝大多数扩增反应，如模板结构复杂，可将预变性时间延长至3～5min以提高预变性效果。
    
  • 注^②：建议采用快速qPCR反应程序，退火温度请以58～62℃作为设定范围的参考，发生非特异性反应时，可提高退火温度。若因使用Tm值较低的引物等
    
  • 原因，得不到良好的实验结果时，可尝试进行常规qPCR扩增，退火温度请以56～64℃的范围作为设定参考。
    
  • 注^③：对于200bp以内的扩增子，延伸时间可设为10s；超过200bp时，推荐延伸时间≥15s。
    
  • 注^④：融解曲线分析请以所使用的荧光定量PCR仪推荐的程序进行设定，由于仪器采集程序区别较大，在此不做推荐。

• 无Ct值出现
  
  • 检测荧光信号的步骤有误：一般染料法采用72℃延伸时采集，探针法则一般在退火结束时或延伸结束采集信号。
    
  • ROX使用错误或者加量有偏差：当ROX浓度太低或太高时，都会影响机器修正后显示的荧光值，Ct值会显示为unknown或空白，可以根据仪器的类型选择合适的ROX类型（I或II），并严格按照1：50的比例添加。
    
  • 引物或探针降解：可通过电泳检测其完整性。
    
  • 模板量不足：对未知浓度的样品应从系列稀释样本的最高浓度做起。
    
  • 模板降解：避免杂质的引入及反复冻融，必要时可以重新制备模板。
• Ct值出现过晚(Ct>38)
  
  • 扩增效率低，反应条件不够优化：设计更好的引物或探针；适当降低退火温度；改为三步法扩增。
    
  • PCR各种反应成分降解或上样量不足：更换试剂或加大上样量，重复实验。
    
  • PCR产物太长：一般采用80bp～150bp的产物长度。
    
  • 热启动时间过短，酶活性中心没有完全暴露，活性发挥受到了影响：建议热启动时间不低于1分钟。
• 标准曲线线性关系不佳
  
  • 加样存在误差，导致标准品不呈梯度：重新加样并重复实验。
    
  • 标准品出现降解：应避免标准品反复冻融，或重新制备并稀释标准品。
    
  • 引物或探针不佳：重新设计更好的引物和探针。
    
  • 模板中存在抑制物，或模板浓度过高：更换模板或提高模板稀释倍数。
• 扩增曲线异常，如断裂或者锯齿状曲线？
  
  • ROX使用错误或者加量有偏差：ROX浓度太低或太高时，机器对荧光值进行修正后会产生断裂的曲线，可根据说明书进行调整。
    
  • 分析数据时通道选择不正确，如没有在PCRmix中加入ROX，但分析时在仪器设置中选择了ROX选项，应根据反应的具体操作情况选择合适的通道。
    
  • 模板的浓度太高/降解或荧光染料发生了降解：建议更换模板或mix。
    
  • 反应管内有气泡：混匀后离心，避免气泡的残留。
    
  • 程序设置时间不当：适当延长延伸时间（40～60秒），充分收集荧光信号。
• 负对照有信号
  
  • 引物设计不够优化：应避免引物二聚体和发夹结构的出现。
    
  • 引物浓度不佳：适当降低引物的浓度，并注意上下游引物的浓度配比。
    
  • 模板有基因组的污染：RNA提取过程中避免基因组DNA的引入，可以稀释模板的浓度或者更换模板。
    
  • 反应体系污染：更换mix、水或者引物等，避免交叉污染。
• 溶解曲线不止一个主峰
  
  • 引物浓度过高或者设计不够优化：应降低引物浓度或者重新设计引物，避免产生引物二聚体。
    
  • 体系被污染：更换试剂后重复实验。
    
  • 反应条件不够优化，引起非特异性扩增：设计特异性更高的引物或探针；适当提高退火温度。
• 同一试剂在不同仪器上产生不同的曲线，如何判断？
  判断标准：扩增效率，灵敏度，特异性。如果扩增效率在90%～110%，都是特异性扩增，可以把数据用于分析。
  
• 溶解曲线中，Tm不出现在80度左右是怎么回事？
  扩增片段100bp左右的，一般应该出现在80度左右。如果低于此温度出现，可能是模板降解。
  
• 溶解程序可否不加？
  如果扩增效果好，特异性高，可以选择不加溶解程序（建议加上）。此外，不同的机型对应不同的溶解曲线设置程序，可根据机型进行相应的设置。
  
• 扩增反应体系5μL，扩增效率低，是什么原因？
  反应体系太小，各种因素的影响相对较大，比如引物浓度、模板浓度及金属离子等都会影响扩增效率。